牛出血性败血症的流行病学、诊断和防控措施

辛启明

（夏河县曲奥乡畜牧兽医工作站 甘肃甘南 747199）

近年来，无论是在家庭散养还是规模化养殖，牛出血性败血症的发病数量及发病程度皆呈上升趋势，该病在发病季节、病牛品种及年龄上皆没有显著特征，做好流行病学诊断和防控措施分析很有必要。

1.1 病原诊断

牛出血性败血症的病原为巴氏杆菌，主要存活于牛体呼吸道当中，革兰氏染色呈阴性，菌体两端呈钝圆状，中间部分微微凸起，该菌很容易受到外界环境的影响，本身抵抗能力很差[1]。诸如在高温状态下便可迅速死亡，以光照直射20～30 min 也会死亡，在空气环境中通常最多能存活2～3 d，在血液中则会存活5～10 d，大多数消毒药剂皆可以将其消灭。病牛、带菌牛及其排泄物是最为主要的传染源，病牛食用过的饲料、饮水以及使用过的一应用具同样也会带有病菌，病菌可通过伤口、呼吸道消化道等途径侵入其他牛只体内，传播渠道多元。此外，在温差较大、圈内环境较差、空气流通不畅、饲料养分不均衡等情形下，很容易引起牛群应激，致使牛体抗病水平大减，此时出现出血性败血症的概率将会更高。一旦感染病原，如果牛只本身抗病水平较高，则遭受病症侵扰的概率较低，反之，如果牛只本身抗病水平较低，即便只有少数病原也容易出现较为严重的病症，对此，牛场人员在平时的饲喂中要有意识地以多种手段强化牛体体质。

1.2 临床症状

大多数病牛在发病后状态不振、反应缓慢、呼吸不畅，进食量大减，常常卧倒在地，粪便稀薄且有明显的异味，牛体多个器官及部位皆会出现大小不一的出血点，基于实际症状的差异，可将病牛细化为三类。具体如下：

1）水肿型，病牛四肢、头、胸等部位皆出现水肿问题，呼吸不畅或者伴有咳嗽，牛口处时常流有白色黏液，双眼发红变肿，结膜出现炎症问题，粪便较为稀薄，病程大多会持续2～3d，直至病牛由于呼吸受阻或身体虚脱而死亡。

2）肺炎型，病牛呼吸不畅，干咳问题十分突出，有些病牛还会伴有呕吐，牛体温度高达42 ℃，鼻腔中时常流有脓性黏液，对其加以听诊可察觉其胸部出现明显的浊音，双眼肿大，时常流泪；
通常病程可延续3～10 d 左右，病症更为严重的病牛还会排出血便、呼吸衰竭、头颈前移等一连串症状，最终会因为牛体虚脱而死亡，这一类型也是临床实践中最为普遍的病牛类型。

3）败血型，病牛体温可迅速升高至41～42 ℃，神态沉郁，牛体虚弱，呼吸受损且伴有时不时的干咳，鼻中流有带血丝的黏液，直接拒绝进食，反刍行为中断，腹部异常疼痛，粪便中常出现血丝，发病时间可达2～3 d，病牛最后死亡。

1.3 病理学变化

病死牛的诸多脏器器官皆有显著的败血症变化，可发现程度不一的充血、出血问题，切开其咽喉以及颈前处肿大硬挺的皮肤后，流有许多颜色淡黄的浑浊液体，同时皮下组织也被血液状内容物浸润。打开病死牛的胸腔后，其中存有诸多纤维素性渗出物，病变最为明显的是肺脏部位，肺脏组织表层还会附着一层纤维素性薄膜，去掉薄膜之后，可以看到在脏器上面长有诸多较小的出血点。发病时间有差异，病死牛的肺脏病变也存有差异，小叶间淋巴管有所加宽，淤血严重，心叶、尖叶处也有许多出血点，膈叶处还有坏死的病灶，切开肿胀的肺脏组织，切面呈现为大理石纹路[2]。上呼吸道黏膜肿大异常，于黏膜表层还能观察到大量脓性分泌物，颈前淋巴结受到炎症影响肿大充血，颜色变化为紫红色，此外，肝、肾、脾脏也皆有程度不一的肿大问题。

1.4 实验室诊断

基于病牛的病程长短、病症表现可以就具体的患病情况做出初步诊断，然而要想得到更为确切的诊断结果，还需依靠更为严谨科学的实验室诊断，可以收集病牛的病变组织，依靠染色镜检开展细致的观察。于镜检过程中，可以观察到革兰氏阴性染色的小杆菌，将病料在培养基上接种，然后放在恒温环境中加以培养，24 h之后可以发现颜色呈灰白、形状呈圆形的小菌落。通过提取、分离操作，可以获取到革兰氏阴性染色的小杆菌，将病料仔细粉碎之后，依托于离心处理程序可以制成悬浊液，将液体以腹腔注射的形式注射至小鼠体中，做好后续观察。如果在注射完24 h 后，发现小鼠已经死亡，并且小鼠皆表现出显著的败血症病症，收集到的病料通过染色镜检，得到同上述诊断相似的结果，则可以确诊为出血性败血症。

2.1 药物防治

考虑到这一疾病发病迅速且危害性大、致死率高，一旦察觉到有相似病症的病牛后，便要立即启动严谨规范的诊断流程，秉持及早发现、及早诊治的原则加以处理，选用高敏抗生素，于病牛一开始发病时便给以药物治疗。针对那些病情尤为严重，治愈概率较小的病牛，则要当断则断，及时放弃，在诊治的同时，对于病牛所在的养殖环境也要立即加以充分消杀，以免周围残余病菌继续传染给其他牛只。在病牛的治疗方面，可以选用丁胺卡那霉素注射液，以肌注形式给病牛注射，用量为0.1 mL/kg·bw，注射频次保持2 次/d，接连用药3 d 便可见疗效[3]。另外，对发病牛肌肉注射青霉素钾320万IU/头，旨在将机体中的病原菌灭活；
无法正常饮食的病牛，需要补充机体营养，可静脉注射葡萄糖；
降温、镇痛可肌注10% VC、安痛定；
心力衰竭的病牛，为促进机体康复，可静脉注射氢化可的松、安钠咖。对未发病牛可肌注青霉素320 万IU/头+10% VC 20 mL/头。在药物搭配方面必须格外谨慎，将具备协同功效的药物加以配伍应用，能强化疗效、降低用量、缩减开支，将相互拮抗的药物搭配在一起，则会影响药效的发挥，致使病程延长，引发诸多损失。

2.2 免疫接种

做好上述处理后，可确保大多数病牛尽快痊愈，将疫情蔓延趋势控制住，平时也需紧抓接种事宜，现阶段，疫苗接种依然是最为有效的疫病预防方式，若是牛场病牛频发出血性败血症，便要为牛只接种牛多杀性巴氏杆菌病灭活疫苗[4]。一般接种后的2 周时间内便可生成有效抗体，继而大大提升防控成效，通常于每年的春秋时节需分别接种一次，可以帮助牛只规避疾病高发期，但在接种时，必须注意剂量的控制：对于体重低于100 kg 的牛只，接种剂量为4 mL，对于体重高于100 kg 的牛只，接种剂量为6 mL，在接种时特别要注意不能同时接种其他疫苗。还需重申的一点是，疫苗接种并不是万能的，牛场人员在牛只接完种之后必须观察牛只的状态表现，以免牛只应激反应过度，若是察觉有牛只存在异常状态，必须及早妥善处理。

2.3 引种管理

强化引种管理和外源隔离，在具备相应条件的前提下，牛场应当施行全进全出、自繁自养的养殖模式，尽可能地规避病源的侵入，此举在防范外来病原侵入，保证牛群的稳定性方面效力显著。若是不具备相应条件，必须自外地引种，则要一毫不苟地依循各项流程做好检疫处理，事先进行全面调查，明确种源地未出现出血性败血症疫情，做到规范引种，严格检疫。在牛只入场之前便要做好一应准备，引入之后需隔离在专门的牛圈，一应用具皆要单独存放、单独清洁，注意观察引入牛只的状态表现，必须确保无异常后方可继续混养。相关部门也需强化检疫，拟定详细的管理规划，强制检疫机构就那些外来引入的猪只加以全面检疫，判断猪只有没有携带病菌，未达到检疫要求的猪只，则需即刻施以必要的防范处理措施，避免其流入市场。

2.4 消毒管理

日常的消毒清洁亦不可落下，牛圈各处要加以充分消杀，84 消毒液、石灰、氢氧化钠溶液皆是较好的药剂选择，尤其是各个角落，饲槽、水槽等用具也不能略过，不忽视每一处细节，方能自根源上将病菌的蔓延渠道一一斩断。平时注意定期更换消毒药剂，此举是为了防范病菌生成抗药性，影响到药效的发挥，若是遇到疾病高发期则要加大消毒频次，在配备消毒药剂时，要一丝不苟地依循药物说明开展。为避免疾病自外传入，尽可能实行封闭化养殖模式，闲杂人员不允许入场，一定要入场时需逐一依循相应的消毒流程做好处理之后方可入场，同时也要避免各个牛圈的饲养人员的随意走动。牛场内还要配备专门的消毒室、更衣室，相应人员在进入牛圈之前务必要消好毒、淋好浴、换好衣，做好准备后方可进入，场区道路方面要将净、污两道分离，避免存在交叉问题。

总而言之，要想切实提高牛出血性败血症防治成效，便需一丝不苟做好流行病学诊断，然后基于诊断结果按部就班就一应处理、治疗事宜做好，为并参照上文提及的治疗方法将一应治疗要点一一落实到位。以期以更具针对性、更为全面化的治疗措施加快病牛的康复进程，平时的养殖中也要免疫接种、环境维护、养殖管理等多方面切入提前加以应对，尽量避免牛出血性败血症的暴发，为牛只供以更为适宜、稳定的养殖环境。

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