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醋酸亮丙瑞林聚乳酸-羟基乙酸共聚物微球的处方优化及评价

来源:网友投稿 时间:2023-07-01 18:35:04 推荐访问: 乙酸 乙酸化学品安全技术说明书 乙酸化学品安全技术说明书下载

郭玉贤,刘磊,郑明秀,郭作娟,梁荣财,2*(.烟台大学药学院,烟台大学新型制剂与生物技术药物研究山东省高校协同创新中心,分子药理和药物评价教育部重点实验室(烟台大学),山东 烟台 264005;
2. 山东绿叶制药有限公司长效和靶向制剂国家重点实验室,山东 烟台 264003)

微球作为一类长效注射剂,通过将药物分散或包裹在生物可降解材料中,保护药物不被酶降解,实现缓释和控释给药,提高药物在体内的耐受性和患者的依从性,以获得良好的治疗效果[1-2]。生物可降解高分子材料因其疗效好、毒性低而被用于微球的制备[3]。其中聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLGA)可以通过改变其组成、相对分子质量和化学结构来调节药物的释放,是目前应用最广泛的缓释微球骨架材料[4]。

醋酸亮丙瑞林是一种促黄体生成激素释放激素类似物,为水溶性九肽,具有高效的垂体-性腺系统抑制作用,可用于治疗激素敏感型前列腺癌、乳腺癌、子宫内膜异位症等疾病[5]。醋酸亮丙瑞林具有亲水性、易被酶降解、pH敏感的物理化学性质,因此存在生物利用度低、生物半衰期短等缺点,需频繁、长期给药[6-7],将其开发成长效注射剂非常必要[8-9]。自美国食品药品监督管理局(FDA)于1989年批准以来,醋酸亮丙瑞林PLGA微球已成为现代长效释放基准产品,是国内外研究的热点[10]。

本研究采用W1/O/W2乳化溶剂挥发法制备醋酸亮丙瑞林PLGA微球,通过Box-Behnken响应面法优化处方,以制备粒径较小,包封率较高的微球,并对其粒径、载药量、包封率、表面形态、药物稳定性、体外加速释放行为等进行表征,为醋酸亮丙瑞林PLGA微球工业化大规模生产的处方设计提供参考。

IKA高速均质机(德国IKA公司);
高速剪切分散乳化机(上海依卡机电制造有限公司);
高效液相色谱仪LC25(Agilent公司);
马尔文3000粒度仪(Malvern Instruments公司);
EM-30型扫描电镜(韩国Coxem公司);
GL21M高速冷冻离心机(长沙湘智离心机仪器有限公司);
电动搅拌器(德国IKA公司);
pH计(上海梅特勒-托利多仪器有限公司);
冷冻干燥机(宁波新芝冻干设备股份有限公司);
SHZ-88水浴恒温振荡器(江苏金怡仪器科技有限公司);
圆二色谱仪(Applied Photophysics Ltd公司)。

醋酸亮丙瑞林(中肽生化有限公司);
二氯甲烷(南京化学试剂股份有限公司,分析纯);
PLGA(7525 2A,山东绿叶制药有限公司);
聚乙烯醇(PVA,德国Merck公司);
吐温20(国药集团化学试剂有限公司);
其余试剂均为色谱纯。

SD大鼠,雄性,体质量(200±20)g [济南朋悦实验动物繁育有限公司,实验动物许可证号:SCXK(鲁)20190003]。将大鼠圈养在(22±1)℃且12 h光照/黑暗循环的标准环境中饲养,并提供标准的饮食和水。所有动物实验均在烟台大学动物实验伦理委员会的指导原则下进行,符合欧盟指令2010/63/EU和国际实验动物评估和认可委员会的要求。

2.1 高效液相色谱条件

色谱柱:Agilent C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);
流动相:乙腈-三乙胺/磷酸盐缓冲溶液(15.2 g三乙胺溶于800 mL超纯水中,用磷酸调节pH 3.0,然后稀释至1000 mL)=24∶76;
柱温:30℃;
流速:1 mL·min-1;
检测波长:220 nm;
进样量:20 μL[11]。醋酸亮丙瑞林的保留时间为8.79 min。

2.2 醋酸亮丙瑞林PLGA微球的制备

采用W1/O/W2乳化溶剂挥发法制备醋酸亮丙瑞林PLGA微球。将PLGA溶于二氯甲烷中形成油相(O),醋酸亮丙瑞林溶于水中,形成内水相(W1)。将油相加入内水相中,在冰水浴条件下21 600 r·min-1均质3 min 50 s,形成初乳(W1/O)。将初乳缓慢加入到1% PVA(W2),在高速剪切分散机的作用下,剪切2 min,形成复乳(W1/O/W2)。转移至恒温搅拌器中固化3 h,以除去大部分二氯甲烷。将所得溶液过180目筛网,离心水洗3次,冷冻干燥后收球。

2.3 Box-Behnken响应面法优化微球处方

通过前期单因素实验的考察,采取三因素三水平Box-Behnken响应面设计对微球粒径、包封率影响较为显著的三个因素进行处方优化。以理论载药量、PVA体积分数[φ(PVA)]、水油相比例(水油比)为自变量,以粒径(Y1)、包封率(Y2)为响应指标。每个自变量选择三个水平,如表1所示。

表1 Box-Behnken响应面设计因素及水平Tab 1 Factor and level of Box-Behnken response surface

按照Box-Behnken响应面法设计原理,17次实验设计方案及数据处理结果如表2所示,使用Design-Expert软件对各项实验数据拟合分析,得到的多项式模型如下:

表2 Box-Behnken响应面设计及其结果Tab 2 Design and response value of Box-Behnken response surface

①Y1:Y1=44.18+11.56A-12.11B-5.78C-2.32AB-4.00AC+1.50BC-3.29A2-3.84B2-2.51C2(R2=0.9922)。

②Y2:Y2=93.79+4.50A+1.64B+4.71C+0.40AB-3.91AC-0.91BC-10.79A2-1.55B2+0.30C2(R2=0.9911)。

对模型进行显著性检验及方差分析,结果如表3、4所示。Y1、Y2模型的F均较大(分别为98.88、86.97),P均小于0.0001,表明模型回归性显著;
模型失拟项的P均大于0.05,表明失拟项不显著,模型拟合度较高,可用于描述各因素与响应指标之间的关系。Y1、Y2模型的R2均大于0.9000(分别为0.9922、0.9911),表明模型相关性良好,可有效预测实验结果。

表3 粒径的响应面方差分析结果Tab 3 Variance analysis of particle size

根据拟合方程绘制三维响应曲图,进一步分析各因素与响应指标之间的相互作用,响应曲图越陡峭,表明该因素影响越显著。图1为粒径的响应面图,可以看出微球粒径随着φ(PVA)和水油比的增加呈现逐渐减小的趋势,随着理论载药量的增加呈现逐渐增大的趋势。结合表3可知,各因素对粒径响应值的影响依次为B>A>C。

图1 各因素对粒径影响的响应面图Fig 1 Response surface of the effect of various factors on the particle size

图2为包封率的响应面曲图。可以看出微球包封率随理论载药量的增加先增大后减小,随水油比的增加而增大,随φ(PVA)的增加而减小。结合表4可知,各因素对包封率响应值的影响依次为A>C>B。

表4 包封率的响应面方差分析结果Tab 4 Variance analysis of encapsulation efficiency

图2 各因素对包封率影响的响应面图Fig 2 Response surface of the effect of various factors on the encapsulation efficiency

2.4 最佳工艺的验证

得到软件模拟出的制备微球的最优处方为:理论载药量为7.59%,φ(PVA)为2%,水油比为200∶1。预测响应值:粒径为20.04 μm,包封率为97.16%。按最优处方制备的3批微球平均粒径为(20.81±1.34)μm,包封率为(95.88±1.56)%,预测值与实际值较为接近,说明该模型可有效预测实验结果。

2.5 微球的评价

2.5.1 粒径的测定 称取适量制备的微球,以超纯水为分散介质,超声1 min,使其分散均匀,测定其粒径。3批微球的粒径分别为20.89、20.54、21.01 μm,PDI分别为2.00、2.11、2.63,粒径分布图见图3。

图3 3批醋酸亮丙瑞林PLGA微球的粒径分布图Fig 3 Particle size distribution of 3 batches of leuprolide acetate PLGA microspheres

2.5.2 载药量和包封率的测定 精密称取10 mg微球,溶于少量乙腈中,超声使其溶解,用水稀释定容至10 mL,离心收集上清液,按“2.1”项下色谱条件测定醋酸亮丙瑞林的含量。分别以下式计算其载药量和包封率:

载药量(%)=微球中醋酸亮丙瑞林的重量/微球总重量×100%

包封率(%)=实际载药量/理论载药量×100%

按最优处方制得的3批微球的平均载药量为(7.28±0.27)%,包封率为(95.88±1.56)%。

2.5.3 表面形态 将适量微球粉末分散固定于导电胶上,真空状态下喷金后放置于扫描电镜中观察微球的表面形态,结果如图4所示。醋酸亮丙瑞林PLGA微球呈球形,表面圆整,且孔道较多。

图4 醋酸亮丙瑞林PLGA微球的表面形态Fig 4 Surface morphology of leuprolide acetate PLGA microspheres

2.5.4 药物的稳定性 精密称取适量醋酸亮丙瑞林原料药及PLGA微球,以乙腈-水为溶剂,配制成一定浓度的溶液,比较其高效液相色谱图和圆二色谱图。前者可以提供不同衍生物的定性信息,后者可以显示二级结构的变化[12]。由图5可知,提取出的药物与原料药的色谱图没有显著差别,表明微球制备过程不影响药物的化学完整性,不存在衍生化产物。圆二色谱图也没有明显的区别,199 nm和228 nm附近分别有一个负峰和一个正峰,其二级结构不受影响(见图6)。因此,醋酸亮丙瑞林的生物稳定性得到了较好的保留。

图5 原料药与醋酸亮丙瑞林PLGA微球的高效液相色谱图Fig 5 HPLC of API and leuprolide acetate PLGA microspheres

图6 原料药与醋酸亮丙瑞林PLGA微球的圆二色谱图Fig 6 CD spectra of API and leuprolide acetate PLGA microspheres

2.5.5 体外加速释放 精密称取20 mg微球置于25 mL离心管中,加入5 mL 5%(V/V)甲醇水溶液,在45℃、50 r·min-1条件下振荡释放。分别在2 h、8 h、24 h、2 d、3 d、5 d、6 d、7 d、8 d、9 d、11 d、13 d取样,离心,取出4 mL上清液,同时补加相同体积的释放介质。按“2.1”项下条件测定醋酸亮丙瑞林含量,计算其累计释放量,以时间为横坐标,累计释放度为纵坐标,绘制其累计释放曲线,结果见图7。醋酸亮丙瑞林PLGA微球在5%甲醇水中的释放呈双相特征。

图7 醋酸亮丙瑞林PLGA微球的体外累计释放曲线Fig 7 In vitro cumulative release profiles of leuprolide acetate PLGA microspheres

以零级释药模型、一级释药模型、Higuchi模型和Korsmeyer-Peppas模型分别对制备的醋酸亮丙瑞林PLGA微球体外累计释放曲线进行拟合,探究其释药机制,结果见表5。各拟合方程的相关性依次为:一级释药模型(R2=0.9946)>Korsmeyer-Peppas模型(R2=0.9716)>Higuchi模型(R2=0.9706)>零级释药模型(R2=0.8418),因此药物在微球中的释放行为可用一级释药模型评价,表明微球呈浓度依赖性[13]。

表5 醋酸亮丙瑞林PLGA微球释药行为拟合方程Tab 5 Fitting equation of drug release behavior of leuprolide acetate PLGA microspheres

2.5.6 生物相容性 将8只SD大鼠随机分为4组,对背部进行脱毛处理,范围为2 cm×2 cm。A、B两组作为对照组,皮下注射生理盐水;
C、D两组作为实验组,皮下注射醋酸亮丙瑞林PLGA微球。在注射后的4 d和25 d分别处死大鼠,取出注射部位的组织,制备成石蜡切片,并用苏木精-伊红(HE)染色,观察大鼠的皮肤在注射部位上的差异。结果对照组和实验组注射部位外观无明显变化,皮肤组织无明显炎症反应,表明所制备的微球具有良好的生物相容性(见图8)。

图8 SD大鼠皮下注射生理盐水(A和B)、微球(C和D)后注射部位HE染色结果(×40)Fig 8 HE staining at the injection site after subcutaneous injection of normal saline(A and B)and microspheres(C and D)(×40)

微球因其巨大的工业价值和广阔的应用前景,已成为药剂学研究热点之一,但我国鲜有相关产品上市,醋酸亮丙瑞林微球作为国内首个上市的微球产品,其工业化规模尚有待扩大[14-15]。本研究采用Box-Behnken响应面法对醋酸亮丙瑞林PLGA微球处方进行优化,通过多元二次回归方程来拟合相关因素与响应值之间的函数关系,得到最优处方的实测值与预测值较为接近,说明响应面法优化微球处方合理可行,准确度高,重现性良好。

本研究选用粒径和包封率作为响应值能直观反映微球制备工艺。三个因素中,φ(PVA)和理论载药量对粒径的影响更大,这是由于φ(PVA)的增加使得外水相黏度增加,液滴聚结减少,形成更小的液滴;
另一方面理论载药量增加,引起内水相黏度增加,乳滴变大,微球粒径随之增大[16]。理论载药量和水油比对包封率的影响更大,这是由于理论载药量增加,药物被包封的概率也随之增加,但同时初乳浓度梯度逐渐增大,促使药物流失到外水相中;
另一方面,随着外水相体积的增加,有机溶剂接触到的水体积增加,从而使聚合物聚结速度更快,限制了药物的外溢,使更多药物保留在微球中[9]。

体外释放行为是评价微球性质的关键性参数。注射用双羟萘酸曲普瑞林使用的释放介质为5%甲醇水溶液。由于亮丙瑞林和曲普瑞林同为促性腺激素释放激素类似物,其释放行为可能具有相似性[17]。因此,本研究选择5%甲醇水作为释放介质。醋酸亮丙瑞林PLGA微球的释放可分为两个阶段,前期快速释放阶段可能是因为微球表面药物的快速溶解,此时微球的释放机制为扩散作用[18];
后期药物的释放可能是由于PLGA的降解,微球骨架结构被逐渐破坏,药物通过孔道和骨架的溶蚀逐渐从微球内部扩散到介质中[19]。

本研究所制备出的醋酸亮丙瑞林PLGA微球包封率高,药物稳定性和生物相容性良好,可为其工业化生产的处方设计提供参考,但其生物有效性有待进一步研究。

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